單細胞測序（scRNA-seq）對于制備的細胞懸液的細胞活性和細胞數目有著較高的要求，而且必須要求新鮮的樣本，但是那些已經凍起來的樣本庫里面大量的珍貴樣本，比如腦組織，心臟組織，腫瘤組織等都無法進行scRNA-seq，單細胞核轉錄組測序的出現極大的解決了這個問題。
單細胞核轉錄組測序（Single Nuclei RNA Sequencing，snRNA-seq）：通過提取樣本單細胞核，然后分離、標記細胞核，在單細胞水平研究核基因表達檢測的技術。為腦組織、心臟、腎臟等復雜組織或一些珍xi凍存樣品提供了單細胞水平研究應用平臺，可挖掘更多潛在的致病細胞類型，更易于探討腫瘤細胞異質性和致病機理。
那么，scRNA-seq和snRNA-seq都什么時候用呢，它們各有什么優缺點呢，下面小編來總結一下。
單細胞核測序（snRNA-seq）的應用
一、腫瘤凍存樣本
研究目的：利用單核RNA測序（snRNA- seq）和單細胞DNA測序研究三陰乳腺癌的耐藥性是由選擇罕見的現有克隆引起的，還是通過獲得新的基因組畸變引起的
樣本信息：8個三陰乳腺癌凍存組織
測序策略：10x平臺，單細胞核測序（snRNA-seq）和單細胞DNA測序
捕獲細胞數：6862個細胞核（snRNA-seq），900個細胞核（單細胞DNA-seq）
結論：耐藥基因型是預先存在的，并由NAC適應性地選擇，而轉錄譜是通過對TNBC患者的化療進行重新編程而獲得
二、腦組織凍存樣本
研究目的：利用單核RNA測序（snRNA- seq）揭示人大腦組織的單細胞轉錄組圖譜
樣本信息：一個正常的51歲女性的死后大腦中6個不同的腦區
測序策略：Fluidigm C1平臺，單細胞核測序（snRNA-seq）
捕獲細胞數：4,488個細胞核
結論：確定了16種神經元亞型，并根據已知的標記和皮質細胞結構對其進行了進一步的注釋；揭示了足以識別神經元亞型和神經解剖學區域的轉錄組特征，同時也揭示了轉錄組的異質性
三、心臟組織冷凍樣本
研究目的：通過單核RNA測序（snRNA- seq）揭示心臟再生反應的分子機制及其在晚期的阻斷作用
樣本信息：心肌梗死（MI）后1天和3天或假手術后P1的再生心臟的心肌細胞，手術后相同的時間點收集了非再生型P8心臟的心肌細胞，共8個樣本
測序策略：10x平臺，單細胞核測序（snRNA-seq）
捕獲細胞數： 21,737個心肌細胞核
結論：繪制了健康、受傷和再生小鼠心臟中五個不同心肌細胞群的動態轉錄圖，揭示了受傷后心臟修復的轉錄情況
四，腎臟冷凍樣本
研究目的：通過單核RNA測序（snRNA- seq）揭示糖尿病腎bin對腎小球和腎小管間質的損害過程中，伴隨的細胞特異性基因表達的變化
樣本信息：3個對照組和3個早期糖尿病腎bin樣本
測序策略：10x平臺，單細胞核測序（snRNA-seq）
捕獲細胞數：23,980 個細胞核
結論：在snRNA-seq數據中腎臟的所有主要細胞類型都得到了體現；結果發現鉀分泌的增加和血管生成的信號代表了人類糖尿病腎bin的早期腎臟反應。
單細胞測序（scRNA-seq）的缺點
一、僅適用于新鮮組織樣本
懸液制備僅適用于新鮮組織樣本，限制了單細胞測序技術的應用，很多具有重要科研和臨床價值的凍存樣本已經喪失活動，無法開展scRNA-seq。
二、某些細胞類型可能丟失，引發細胞類型的偏好
不易解離的細胞容易丟失，同時一些較為敏感的細胞可能會因為解離過度而破碎，比如：腦，心臟，腎臟，肝臟等，蛋白酶可能傾向于易于解離的細胞類型，不易解離的細胞類型容易丟失，或者敏感的細胞類型會破碎，會影響細胞類型的完整性。
例如腦組織無法通過常規的解離手段獲得完好的細胞，因此這一組織中的細胞類型非常容易丟失。腦部的新生神經元（newborn neurons）也會遭遇同樣的。
例如腎臟組織中的腎小球足細胞（glomerular podocytes）, 腎小球系膜細胞（mesangial cells）, 以及內皮細胞（endothelial cells）都無法通過scRNA-seq得到鑒別；肺臟組織如果通過scRNA-seq來鑒定細胞類型，會發現上皮細胞比例嚴重失真，而部分稀有細胞類型則無法得到鑒別。
三、懸液消化過程可能會導致應激基因的表達
解離過程可能會誘導應激基因的表達，引起細胞轉錄發生“人為改變"，造成“轉錄偏好（bias），這樣可能會一定程度影響樣本的真實情況。
四、特殊細胞情況：細胞較大、細胞形狀不規則、細胞結團等情況
有些細胞類型，比如：心肌細胞、骨骼肌細胞和成熟的脂肪細胞，這些細胞都是直徑比較大的細胞，是不能通過10x平臺的微管道或者落入BD平臺芯片的小孔的，如果研究的樣本類型為心臟、脂肪等且關注心肌細胞、脂肪細胞信息，scRNA-seq就沒有辦法滿足需求。
單細胞核測序（snRNA-seq）的優點
1、細胞核的獲得比細胞懸液的獲得簡單
單細胞懸液制備過程往往是造成實驗可變性的主要因素。如何獲得足質足量的單細胞懸液，這是實驗面臨的第一個難題，特別是那些稀有細胞或難以解離的細胞；細胞核膜相比細胞膜更為堅固，因此，凍存組織細胞膜破裂后細胞核則能夠保持完整，由于僅涉及機械破碎和簡單的純化，snRNA-seq操作步驟相對簡化，便于開展實驗，其穩定性相比scRNA-seq大大提高。
2、適用的樣本類型擴大
單細胞核測序snRNA-seq由于是抽提細胞核進行測序，所以可以應用于凍存的樣本，極大的利用了那些生理病理數據清晰的凍存樣本；對于那些新鮮樣本解離成功率低的樣本；或者是樣本的收集難度大，收集周期長，比如一個樣本不同階段的評估，或者根據治療結果決定前端樣本是否入組等情況；亦或是細胞體積大，形狀不規則的樣本都可以用snRNA-seq來解決。
3、降低人為引入的轉錄偏差
因為組織可以直接從凍存狀態開始抽核，此狀態下細胞轉錄活動已經被抑制并固定，因此不會再發生轉錄狀態改變，結果真實性提高。
4、能夠鑒定到的細胞類型更為全面和完整
直接對細胞進行機械法或者化學法破碎，不會引入的解離偏好性，理論上來講所有細胞類型都能得到回收，能夠獲得更加完整和全面的細胞圖譜。
單細胞核測序（snRNA-seq）的缺點
1、snRNA-seq會有檢測到的基因偏少的風險
雖然有一些比較單細胞RNA測序（scRNA-seq）和單細胞核（snRNA-seq）測序的研究表明，轉錄本在整個細胞和細胞核中的表達程度相當；是理論上來講，缺失了細胞質中的RNA分子，snRNA-seq在鑒定細胞轉錄狀態中可能不如scRNA-seq，同時由于細胞核中帶有polyA尾的成熟mRNA比例更低，因此對于某些樣本而言，采用SnRNA-seq每個細胞核中檢測到的基因可能會有偏少的風險，不利于細胞亞型的鑒定。
2、snRNA-seq對免疫細胞類型的獲得不友好
雖然snRNA-seq能夠獲得更加全面完整的細胞類型，但是對于某些細胞類型的獲得比例不如scRNA-seq，主要表現為免疫細胞。
單細胞核測序（snRNA-seq）和單細胞測序（scRNA-seq）各有優缺點和局限性，老師們根據具體的實驗目的選擇合適的測序類型。
